![\"\"](\"https:\/\/www.nosoinfo.be\/nosoinfos\/wp-content\/uploads\/2024\/04\/carba-1-750x600.jpg\")
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Les ent\u00e9robact\u00e9ries productrices de carbap\u00e9n\u00e9mase (EPC) ont \u00e9t\u00e9 cat\u00e9goris\u00e9es par l\u2019Organisation mondiale de la sant\u00e9 comme pathog\u00e8nes de priorit\u00e9 1 (critique) dans le classement des bact\u00e9ries r\u00e9sistantes aux antibiotiques [2]<\/sup>. Une colonisation \u00e0 EPC est associ\u00e9e \u00e0 un risque d\u2019infection de 16,5 %. Ce risque\u00a0 <\/span>augmente consid\u00e9rablement chez les personnes \u00e2g\u00e9es et les patients immunod\u00e9prim\u00e9s [3, 4]<\/sup>. Les EPC \u00e9tant g\u00e9n\u00e9ralement multir\u00e9sistantes, les infections sont souvent difficiles \u00e0 traiter car les options antibiotiques disponibles sont peu nombreuses. Par cons\u00e9quent, le pronostic clinique est p\u00e9joratif et la morbidit\u00e9 globale, la dur\u00e9e du s\u00e9jour et la mortalit\u00e9 sont plus \u00e9lev\u00e9es comparativement aux infections \u00e0 ent\u00e9robact\u00e9ries non productrices de carbap\u00e9n\u00e9mase [4]<\/sup>.\u00a0<\/span><\/p>\n Citrobacter freundii<\/i> est une bact\u00e9rie \u00e0 Gram n\u00e9gatif, ana\u00e9robie facultative, de forme bacillaire, que l\u2019on trouve dans le sol, l\u2019eau, les aliments et les intestins. Elle est souvent consid\u00e9r\u00e9e comme un contaminant ou un colonisateur inoffensif. Pourtant, Citrobacter <\/i>spp. peut occasionner des infections s\u00e9v\u00e8res et difficiles \u00e0 traiter, en particulier chez les nouveau-n\u00e9s, les personnes \u00e2g\u00e9es et chez les patients immunod\u00e9prim\u00e9s [5]<\/sup>. Il est de plus en plus \u00e9vident que Citrobacter freundii<\/i> joue un r\u00f4le croissant dans les foyers d\u2019EPC dans les \u00e9tablissements de sant\u00e9 [6, 7]<\/sup>.<\/p>\n La colonisation \u00e0 EPC chez les patients se produit g\u00e9n\u00e9ralement dans le tractus gastro-intestinal, et l\u2019on peut donc s\u2019attendre \u00e0 sa pr\u00e9sence dans les eaux us\u00e9es des h\u00f4pitaux. Les installations sanitaires des h\u00f4pitaux, comme les lavabos, les toilettes et les douches sont reconnus comme constituant des r\u00e9servoirs d\u2019EPC [7, 8]<\/sup>. L\u2019environnement humide cr\u00e9e des conditions favorables \u00e0 une colonisation microbienne. En outre, il a \u00e9t\u00e9 d\u00e9montr\u00e9 dans plusieurs \u00e9tablissements de soins de sant\u00e9 que l\u2019eau des toilettes constituait un r\u00e9servoir de choix pour la transmission d\u2019EPC, y compris dans le service des grands br\u00fbl\u00e9s de notre propre \u00e9tablissement [9]<\/sup>.\u00a0<\/span><\/p>\n Les canalisations d\u2019eaux us\u00e9es sont consid\u00e9r\u00e9es comme une voie de propagation possible. Cependant, il n\u2019existe encore que peu de donn\u00e9es dans la litt\u00e9rature sur leur importance en milieu hospitalier. Dans notre \u00e9tude, des isolats cliniques et environnementaux d\u2019EPC C. freundii<\/i> collect\u00e9s entre 2015 et 2022 ont \u00e9t\u00e9 analys\u00e9es sur le plan de leur parent\u00e9 clonale par le s\u00e9quen\u00e7age de g\u00e9nome complet (WGS) suivi de leur g\u00e9notypage par comparaison des s\u00e9quences d\u2019un s\u00e9rie de g\u00e8nes du g\u00e9nome de base (core genome MLST ou cgMLST). Notre travail avait comme objectif d\u2019\u00e9valuer l\u2019importance des syst\u00e8mes d\u2019\u00e9vacuation d\u2019eaux us\u00e9es en tant que r\u00e9servoirs et vecteurs de transmission des EPC et de pouvoir introduire ainsi des mesures pr\u00e9ventives cibl\u00e9es.\u00a0<\/span><\/p>\n Suite \u00e0 la survenue fr\u00e9quente et inattendue de Citrobacter freundii<\/i> producteurs de carbap\u00e9n\u00e9mase chez des patients du service g\u00e9riatrique de l\u2019h\u00f4pital universitaire de Gand, nous avons r\u00e9alis\u00e9 de mani\u00e8re r\u00e9trospective une analyse mol\u00e9culaire d\u2019isolats bact\u00e9riens provenant de patients (n=30) et d\u2019\u00e9chantillons environnementaux (n=23) afin d\u2019obtenir une vision plus d\u00e9taill\u00e9e de la situation. Les \u00e9chantillonnages ont \u00e9t\u00e9 effectu\u00e9s entre 2015 et 2022.<\/p>\n Les analyses conventionnelles comprennent l\u2019identification des bact\u00e9ries par MALDI-TOF MS et la d\u00e9tection du type de carbap\u00e9n\u00e9mases par PCR [9]<\/sup>. L\u2019extraction de l\u2019ADN a ensuite \u00e9t\u00e9 r\u00e9alis\u00e9e sur des isolats s\u00e9lectionn\u00e9s, suivie du s\u00e9quen\u00e7age du g\u00e9nome complet par la m\u00e9thode Illumina (HiSeq 3000\/NovaSeq 6000). L\u2019analyse g\u00e9nomique a \u00e9t\u00e9 r\u00e9alis\u00e9e par comparaison des s\u00e9quences de g\u00e8nes du g\u00e9nome par cgMLST, qui permet de d\u00e9terminer si les isolats sont apparent\u00e9s les uns aux autres (diff\u00e9rence de moins de 20 all\u00e8les) ou non (diff\u00e9rence de plus de 40 all\u00e8les).<\/p>\n Le service de g\u00e9riatrie o\u00f9 l\u2019\u00e9tude a \u00e9t\u00e9 r\u00e9alis\u00e9e se compose de 17 chambres de patients situ\u00e9es du m\u00eame c\u00f4t\u00e9 du couloir\u2009; chaque chambre dispose d\u2019une petite salle de bains. Les eaux grises (lavabo\/douche) et brunes (toilettes) sont transport\u00e9es par des tuyaux adjacents distincts dans 2 circuits (chambre R1-R9 et chambre R10-R16). Lors de leur admission dans le service de g\u00e9riatrie, tous les patients ont fait l\u2019objet d\u2019un d\u00e9pistage syst\u00e9matique des EPC par \u00e9couvillonnage rectal. En cas de test positif pour EPC pendant l\u2019hospitalisation, l\u2019ensemble des patients du service faisaient l\u2019objet d\u2019un d\u00e9pistage hebdomadaire. Les patients porteurs d\u2019EPC \u00e9taient maintenus en isolement, avec des proc\u00e9dures de nettoyage strictes apr\u00e8s leur sortie. Toutes les chambres \u00e9taient nettoy\u00e9es quotidiennement.<\/p>\n D\u00e9tection d\u2019EPC<\/b><\/p>\n Sur une d\u00e9cennie (2012-2021), une ou plusieurs esp\u00e8ces d\u2019EPC ont \u00e9t\u00e9 isol\u00e9es chez 65 patients du service g\u00e9riatrique de l\u2019h\u00f4pital universitaire de Gand, parmi lesquels 14 avaient d\u00e9velopp\u00e9 une infection. La grande majorit\u00e9 des cas \u00e9taient nosocomiaux (92,3 %) et Citrobacter freundii<\/i> a \u00e9t\u00e9 d\u00e9tect\u00e9 chez pr\u00e8s de la moiti\u00e9 des patients (47,7 %), comme le montre la figure 1. Les autres esp\u00e8ces fr\u00e9quemment d\u00e9tect\u00e9es \u00e9taient K. pneumoniae<\/i> (38,4 %) et E. coli<\/i> (29,2 %).<\/p>\n L\u2019examen de l\u2019environnement s\u2019est concentr\u00e9 sur l\u2019eau des toilettes, les canalisations d\u2019\u00e9vacuation des douches et les siphons de lavabos ; les environnements positifs faisant l\u2019objet d\u2019un suivi r\u00e9gulier. Les tuyaux de collecte des eaux us\u00e9es (gris et bruns) ont \u00e9galement \u00e9t\u00e9 examin\u00e9s. Au total, la pr\u00e9sence d\u2019une ou de plusieurs ECP a \u00e9t\u00e9 d\u00e9tect\u00e9e dans 77 des 389 \u00e9chantillons environnementaux analys\u00e9s, comme le montre la figure 1. Les taux de d\u00e9tection les plus \u00e9lev\u00e9s ont \u00e9t\u00e9 observ\u00e9s dans les canalisations d\u2019\u00e9vacuation des douches (38,2 %) et dans des \u00e9chantillons d\u2019eau des toilettes (25,0 %). Les taux de positivit\u00e9 pour EPC relev\u00e9s dans les \u00e9chantillons pr\u00e9lev\u00e9s \u00e9taient dix fois inf\u00e9rieurs (3,3 %) dans les siphons de lavabos. Citrobacter freundii<\/i> \u00e9tait l\u2019esp\u00e8ce la plus fr\u00e9quemment d\u00e9tect\u00e9e (52,1 %), suivie du complexe Enterobacter cloacae <\/i>(41,1 %), de Klebsiella pneumoniae<\/i> (9,6 %) et de Klebsiella oxytoca<\/i> (6,8 %).<\/p>\n Analyse de clonalit\u00e9 des souches<\/b><\/p>\n Pour \u00e9tudier la parent\u00e9 clonale entre isolats de patients et isolats environnementaux, le s\u00e9quen\u00e7age du g\u00e9nome entier (WGS) a \u00e9t\u00e9 r\u00e9alis\u00e9 sur 53 isolats de Citrobacter freundii<\/i>. Le clustering, bas\u00e9 sur l\u2019arbre couvrant minimum (Minimum Spanning Tree, MST) cr\u00e9\u00e9 apr\u00e8s analyse cgMLST, a mis en \u00e9vidence 12 cas dans lesquels aucune relation clonale n\u2019a pu \u00eatre trouv\u00e9e : \u00ab\u2009sporadique\u2009\u00bb, voir figures 2 & 3. Les 41 autres isolats \u00e9taient distribu\u00e9s dans 5 clusters diff\u00e9rents : Cluster A-E.\u00a0<\/span><\/p>\n Le cluster B (ST170) comprend 12 isolats dont 9 sont \u00e9troitement li\u00e9s et 4 sont plus distants. Tous les \u00e9chantillons, sauf un, ont \u00e9t\u00e9 pr\u00e9lev\u00e9s dans la m\u00eame pi\u00e8ce : R06, voir Figure 3. Le premier isolat provenait d\u2019un patient en 2015 et le dernier d\u2019un \u00e9chantillon pr\u00e9lev\u00e9 dans la conduite d\u2019\u00e9vacuation des eaux brunes des chambres R01-R09 en 2022. Au total, 8 patients, class\u00e9s comme nosocomiaux, ont \u00e9t\u00e9 associ\u00e9s \u00e0 ce cluster. Trois ans s\u00e9parent le deuxi\u00e8me (2015) et le troisi\u00e8me (2018) patient. Le retour du clone en 2018 n\u2019a pas pu \u00eatre expliqu\u00e9 par la r\u00e9introduction d\u2019un ancien r\u00e9sident. En 2017, cependant, le m\u00eame clone de ClusterB a \u00e9t\u00e9 d\u00e9tect\u00e9 dans l\u2019eau des toilettes de la chambre R06. Un clone associ\u00e9 a \u00e9t\u00e9 retrouv\u00e9 dans l\u2019eau des toilettes en 2019 et en 2021, indiquant la pr\u00e9sence probable d\u2019un r\u00e9servoir dans les toilettes. Une situation similaire a \u00e9t\u00e9 observ\u00e9e pour le ClusterC (ST421). Ce groupe se compose de deux isolats de patients et d\u2019un isolat de toilettes, tous collect\u00e9s dans la m\u00eame pi\u00e8ce : R02. Les \u00e9chantillons ont \u00e9t\u00e9 pr\u00e9lev\u00e9s \u00e0 plus d\u2019un an d\u2019intervalle (2018, 2019 et 2021).<\/p>\n Le clusterA (ST22) compte 21 isolats, dont 12 sont issus de patients entre 2018 et 2021. Au cours de la p\u00e9riode \u00e9tudi\u00e9e, le cluster semble se d\u00e9placer progressivement dans le couloir, en d\u00e9marrant dans les chambres situ\u00e9es dans la deuxi\u00e8me moiti\u00e9 du couloir pour s\u2019\u00e9tendre ensuite aux chambres situ\u00e9es au d\u00e9but, comme le montre la figure 3. Plusieurs mois s\u00e9paraient les cas de la plupart des patients\u2009; la pr\u00e9sence d\u2019un r\u00e9servoir dans l\u2019environnement a donc \u00e9t\u00e9 suspect\u00e9e. Des isolats provenant de 6 \u00e9chantillons de toilettes et de 2 canaux d\u2019\u00e9vacuations de douche ont \u00e9t\u00e9 class\u00e9s dans le m\u00eame cluster. Dans la chambre R04, la pr\u00e9sence de Citrobacter freundi<\/i>i ClusterA a pu \u00eatre confirm\u00e9e plusieurs semaines avant le diagnostic du premier patient ClusterA dans cette chambre. Finalement (en 2022), le ClusterA a \u00e9galement \u00e9t\u00e9 d\u00e9tect\u00e9 dans la conduite d\u2019\u00e9vacuation des eaux grises des chambres R01-R09.<\/p>\n R\u00e9servoirs d\u2019eau<\/b><\/p>\n Les r\u00e9servoirs d\u2019eau jouent un r\u00f4le crucial dans la transmission des EPC, et cela a \u00e9t\u00e9 bien d\u00e9crit surtout pour les lavabos [3]<\/sup>. Dans notre \u00e9tude, les \u00e9chantillons pr\u00e9lev\u00e9s dans les toilettes et les drains de douche se sont r\u00e9v\u00e9l\u00e9s plus souvent positifs pour EPC que ceux pr\u00e9lev\u00e9s au niveau des siphons de lavabos. L\u2019analyse cgMLST a mis en \u00e9vidence deux clusters qui se sont manifest\u00e9s exclusivement dans des chambres sp\u00e9cifiques. Ces clusters ont \u00e9galement \u00e9t\u00e9 d\u00e9tect\u00e9s dans l\u2019eau des toilettes des chambres respectives. Bien qu\u2019il soit difficile de prouver que les toilettes jouent un r\u00f4le de r\u00e9cepteur ou de diss\u00e9minateur [10]<\/sup>, un r\u00f4le de diss\u00e9minateur est suspect\u00e9 ici, \u00e9tant donn\u00e9 que les clusters ont \u00e9t\u00e9 d\u00e9tectables pendant plusieurs ann\u00e9es, m\u00eame \u00e0 des moments o\u00f9 aucun patient porteur d\u2019EPC n\u2019occupait la chambre. La transmission pourrait \u00eatre due \u00e0 la formation de gouttelettes ou de bioa\u00e9rosols, comme cela a \u00e9galement \u00e9t\u00e9 d\u00e9crit dans d\u2019autres foyers d\u2019EPC [8, 9]<\/sup>. \u00c0 cause de la chasse d\u2019eau et de la formation subs\u00e9quente de bioa\u00e9rosols, les bact\u00e9ries (pathog\u00e8nes) peuvent se r\u00e9pandre dans la zone (> 0,5 m) et rester en suspension dans l\u2019air pendant de longues p\u00e9riodes (> 15 min), entra\u00eenant une transmission par contact avec la peau, contamination des surfaces ou inhalation [11]<\/sup>. En outre, la transmission peut se faire par la diffusion de gouttelettes lors de la chasse d\u2019eau et de la miction [12]<\/sup>. L\u2019hypoth\u00e8se d\u2019un r\u00f4le important des sanitaires dans la conservation d\u2019un r\u00e9servoir d\u2019organismes multir\u00e9sistants est de plus en plus souvent avanc\u00e9e, en particulier dans les services o\u00f9 l\u2019exposition aux antibiotiques est \u00e9lev\u00e9e [13]<\/sup>.<\/p>\n Migration par l\u2019interm\u00e9diaire d\u2019un biofilm<\/b><\/p>\n Le plus grand cluster de Citrobacter freundii<\/i> producteur de carbap\u00e9n\u00e9mase s\u2019est r\u00e9pandu dans tout le service. Une part consid\u00e9rable des transmissions n\u2019a pu \u00eatre expliqu\u00e9e par des transmissions de patient \u00e0 patient du fait des longs intervalles entre les admissions, souvent de plusieurs mois. Des recherches ant\u00e9rieures men\u00e9es \u00e0 l\u2019UZ Gent ont r\u00e9v\u00e9l\u00e9 que les conduites d\u2019\u00e9vacuation \u00e9taient une voie possible de contamination crois\u00e9e d\u2019EPC d\u2019une chambre \u00e0 l\u2019autre par migration r\u00e9trograde de biofilms [9]<\/sup>. Nous partons de l\u2019hypoth\u00e8se d\u2019un m\u00e9canisme similaire pour la diffusion de ce vaste cluster. Nous supposons que la transmission interne par la formation r\u00e9trograde d\u2019un biofilm dans les conduites d\u2019\u00e9vacuation s\u2019est produite dans au moins trois situations. De plus, cette hypoth\u00e8se est \u00e9tay\u00e9e par la d\u00e9tection du cluster dans le tuyau d\u2019\u00e9vacuation des eaux grises situ\u00e9 \u00e0 quelques m\u00e8tres de l\u00e0, plus d\u2019un an apr\u00e8s la d\u00e9tection du dernier patient du cluster. Des \u00e9tudes portant sur des souches d\u2019Escherichia coli <\/i>ont montr\u00e9 que la propagation par biofilm de tuyaux d\u2019\u00e9vacuation \u00e0 des drains en milieu hospitalier pouvait se produire \u00e0 une vitesse d\u2019environ 2,5 cm par jour [14]<\/sup>. Th\u00e9oriquement, une distance de quelques m\u00e8tres pourrait \u00eatre parcourue en moins de 6 mois, ce qui semble r\u00e9aliste au vu de la chronologie des \u00e9v\u00e9nements de notre \u00e9tude. A notre connaissance, un biofilm d\u2019EPC se propageant sur plusieurs m\u00e8tres dans des canalisations d\u2019\u00e9vacuation n\u2019a jamais \u00e9t\u00e9 rapport\u00e9e \u00e0 ce jour.<\/p>\n \u00c9limination des r\u00e9servoirs<\/b><\/p>\n En 2020, il y a eu nettement moins de cas d\u2019EPC chez les patients. Cela pourrait \u00eatre attribu\u00e9 \u00e0 une plus grande adh\u00e9sion aux protocoles d\u2019hygi\u00e8ne des mains et de nettoyage durant la pand\u00e9mie de SARS-CoV-2. Un autre facteur contributif pourrait \u00eatre la d\u00e9sinfection quotidienne des toilettes avec une solution d\u2019eau de Javel dilu\u00e9e entre d\u00e9cembre 2019 et janvier 2021. Bien qu\u2019un nettoyage r\u00e9gulier \u00e0 l\u2019eau de Javel ou \u00e0 l\u2019acide ac\u00e9tique puisse r\u00e9duire temporairement le nombre de micro-organismes r\u00e9sistants, le remplacement des r\u00e9servoirs contamin\u00e9s est souvent consid\u00e9r\u00e9 comme la m\u00e9thode la plus efficace. Cependant, le remplacement des installations sanitaires n\u2019est pas une garantie de succ\u00e8s en raison du risque de recolonisation par les patients ou de migration r\u00e9trograde de biofilms dans le syst\u00e8me d\u2019\u00e9gouttage. Une exp\u00e9rience avec de nouvelles toilettes dans une chambre a r\u00e9v\u00e9l\u00e9 une recolonisation en l\u2019espace de deux semaines. La suppression totale des lavabos et les soins aux patients sans eau se sont av\u00e9r\u00e9s b\u00e9n\u00e9fiques dans certains contextes, mais ces mesures sont difficiles \u00e0 mettre en \u0153uvre dans les services hospitaliers ordinaires [15]<\/sup>. Un essai contr\u00f4l\u00e9 randomis\u00e9 sugg\u00e8re qu\u2019une combinaison de nettoyage chimique, m\u00e9canique et thermique au niveau du siphon P fournit la meilleure d\u00e9sinfection \u00e0 court terme pour les drains de lavabos et de douches, mais la mise en \u0153uvre de ces m\u00e9thodes est compliqu\u00e9e au niveau des siphons P des douches et pour les toilettes [16]<\/sup>.<\/p>\n R\u00e9duction de l\u2019exposition<\/b><\/p>\n Le lavage sans eau, gr\u00e2ce \u00e0 l\u2019utilisation de lingettes nettoyantes, est devenu la norme dans le service. Notons que les douches \u00e9taient d\u00e9j\u00e0 peu utilis\u00e9es par la population g\u00e9riatrique. En outre, des autocollants imprim\u00e9s indiquant \u00ab\u2009Fermez le couvercle des toilettes avant de tirer la chasse\u2009\u00bb ont \u00e9t\u00e9 plac\u00e9s sur toutes les toilettes au cours des premiers mois de la pand\u00e9mie (mai 2020) afin de r\u00e9duire la propagation des micro-organismes sur les surfaces environnantes. Toutefois, on ne sait pas dans quelle mesure cette instruction a \u00e9t\u00e9 suivie. Les salles de bains des h\u00f4pitaux sont souvent petites et les lavabos, les toilettes et la douche sont proches les uns des autres. Cela peut entra\u00eener une contamination crois\u00e9e des installations sanitaires par bioa\u00e9rosols. C\u2019est pourquoi il est pr\u00e9f\u00e9rable d\u2019installer les toilettes dans une pi\u00e8ce s\u00e9par\u00e9e ou d\u2019utiliser des \u00e9crans de protection pour cr\u00e9er une barri\u00e8re physique. Une nouvelle technique visant \u00e0 r\u00e9duire la diffusion des bioa\u00e9rosols et des gouttelettes d\u2019eau dans la cuvette des toilettes consiste \u00e0 cr\u00e9er une couche de mousse, comme le d\u00e9crivent Arena et al. [12]<\/sup>. Pour rem\u00e9dier au probl\u00e8me de la propagation par biofilm, la conception et l\u2019entretien des canalisations hospitali\u00e8res rev\u00eatent une importance cruciale. La formation d\u2019un biofilm est favoris\u00e9e par la stagnation de l\u2019eau, la corrosion des tuyaux, une temp\u00e9rature ambiante \u00e9lev\u00e9e et la pr\u00e9sence de nutriments. Le syst\u00e8me de canalisation et l\u2019utilisation des installations sanitaires doivent donc \u00eatre \u00e9valu\u00e9s et am\u00e9lior\u00e9s dans la mesure du possible, \u00e9ventuellement \u00e0 l\u2019aide de directives telles que celles \u00e9mises par les Centres de contr\u00f4le et de pr\u00e9vention des maladies (CDC). Enfin, le comportement des prestataires de soins de sant\u00e9 est \u00e9galement consid\u00e9r\u00e9 comme un facteur crucial, notamment le respect des directives en mati\u00e8re d\u2019hygi\u00e8ne des mains et l\u2019utilisation correcte des installations sanitaires.\u00a0<\/span><\/p>\n Cette \u00e9tude r\u00e9trospective sugg\u00e8re fortement l\u2019implication des sanitaires et des conduites d\u2019\u00e9vacuation dans la propagation et la transmission d\u2019EPC en milieu hospitalier. La clonalit\u00e9 a \u00e9t\u00e9 d\u00e9montr\u00e9e pour cinq clusters de Citrobacter freundii <\/i>producteur de carbap\u00e9n\u00e9mase par s\u00e9quen\u00e7age complet du g\u00e9nome suivi d\u2019une analyse par cgMLST. Trois clusters comprenaient des isolats de patients ainsi que des isolats provenant de l\u2019eau des toilettes et des drains de douches. La transmission indirecte semble r\u00e9sulter de la formation de bioa\u00e9rosols et de gouttelettes lors de l\u2019utilisation des toilettes ou de la douche. L\u2019eau des toilettes ou le drain de la douche \u00e9tait colonis\u00e9 par le m\u00eame cluster de Citrobacter freundii <\/i>dans plus d\u2019une chambre sur trois au service de g\u00e9riatrie. La propagation semble s\u2019\u00eatre faite graduellement sur plusieurs ann\u00e9es, malgr\u00e9 les mesures d\u2019isolement de contact et les proc\u00e9dures de nettoyage et de d\u00e9sinfection. En outre, des isolats de la m\u00eame souche ont \u00e9t\u00e9 d\u00e9tect\u00e9s dans la conduite d\u2019\u00e9vacuation des eaux us\u00e9es. C\u2019est pourquoi nous sugg\u00e9rons que la propagation interne s\u2019est produite \u00e0 travers le syst\u00e8me de drainage par la formation r\u00e9trograde de biofilms. Une approche pluridisciplinaire est n\u00e9cessaire pour r\u00e9soudre ce probl\u00e8me complexe, notamment en am\u00e9liorant l\u2019utilisation, le nettoyage, la conception et l\u2019entretien des installations sanitaires et de la plomberie dans les \u00e9tablissements de soins de sant\u00e9.<\/p>\n \u00a0<\/p>\n Figure 1 : Visualisation des ent\u00e9robact\u00e9ries productrices de carbap\u00e9n\u00e9mase (EPC) par esp\u00e8ce au fil du temps dans des \u00e9chantillons de patients et d\u2019environnement dans le service g\u00e9riatrique de l\u2019UZ Gent [1].<\/i><\/p>\n Figure 2 : Analyse en cluster de 53 isolats de Citrobacter freundii [1].<\/i><\/p>\n Un cladogramme permet de visualiser les r\u00e9sultats du clustering hi\u00e9rarchique de l\u2019analyse cgMLST. Les isolats bact\u00e9riens regroup\u00e9s dans le cluster (vert, rouge, violet, gris, bleu) pr\u00e9sentent moins de 20 all\u00e8les de diff\u00e9rence entre eux. Les isolats associ\u00e9s pr\u00e9sentent moins de 40 all\u00e8les de diff\u00e9rence entre eux. Tous les autres sont class\u00e9s dans la cat\u00e9gorie \u00ab\u2009sporadique\u2009\u00bb (jaune).<\/p>\n Figure 3 : Visualisation de 53 isolats de Citrobacter freundii au fil du temps en fonction du site de collecte [1].<\/i><\/p>\n BW=eau brune, GW=eau grise, P=groupe de conduites d\u2019eaux us\u00e9es (P01 collecte les chambres R01 \u00e0 R09\u2009; P03 collecte les chambres R10 \u00e0 R16), R=num\u00e9ro de chambre du patient. Les isolats bact\u00e9riens sont color\u00e9s en fonction du cluster qui leur a \u00e9t\u00e9 attribu\u00e9, les isolats de patients sont indiqu\u00e9s par un point \u00e0 l\u2019int\u00e9rieur.<\/p>\n 1.Hamerlinck, H., et al., Sanitary installations and wastewater plumbing as reservoir for the long-term circulation and transmission of carbapenemase producing Citrobacter freundii clones in a hospital setting. Antimicrob Resist Infect Control, 2023. 12(1): p. 58.<\/p>\n 2.Tacconelli, E., et al., Discovery, research, and development of new antibiotics: the WHO priority list of antibiotic-resistant bacteria and tuberculosis. The Lancet Infectious Diseases, 2018. 18(3): p. 318-327.<\/p>\n 3.Kizny Gordon, A.E., et al., The Hospital Water Environment as a Reservoir for Carbapenem-Resistant Organisms Causing Hospital-Acquired Infections-A Systematic Review of the Literature. Clin Infect Dis, 2017. 64 (10) : p. 1435-1444.<\/p>\n 4.Tischendorf, J., R.A. de Avila, and N. Safdar, Risk of infection following colonization with carbapenem-resistant Enterobactericeae: A systematic review. Am J Infect Control, 2016. 44 (5) : p. 539-43.<\/p>\n 5.Lipsky, B.A.H.I., E. W.\u2009; Smith, A. A.\u2009; Plorde, J. J., Citrobacter Infections in Humans: Experience at the Seattle Veterans Administration Medical Center and a Review of Literature. Reviews of Infectious Diseases, 1980. 2(5).<\/p>\n 6.Yao, Y., et al., Carbapenem-Resistant Citrobacter spp. as an Emerging Concern in the Hospital-Setting: Results From a Genome-Based Regional Surveillance Study. Front Cell Infect Microbiol, 2021. 11 : p. 744431.<\/p>\n 7.Jolivet, S., et al., Outbreak of OXA-48-producing Enterobacterales in a haematological ward associated with an uncommon environmental reservoir, France, 2016 to 2019. Euro Surveill, 2021. 26(21).<\/p>\n 8. Smismans, A., et al., New environmental reservoir of CPE in hospitals. The Lancet Infectious Diseases, 2019. 19(6): p. 580-581.<\/p>\n 9.Heireman, L., et al., Toilet drain water as a potential source of hospital room-to-room transmission of carbapenemase-producing Klebsiella pneumoniae. J Hosp Infect, 2020. 106(2): p. 232-239.<\/p>\n 10.Park, S.C., et al., Risk Factors Associated with Carbapenemase-Producing Enterobacterales (CPE) Positivity in the Hospital Wastewater Environment. Appl Environ Microbiol, 2020. 86 (24).<\/p>\n 11.Knowlton, S.D., et al., Bioaerosol concentrations generated from toilet flushing in a hospital-based patient care setting. Antimicrob Resist Infect Control, 2018. 7: p. 16.<\/p>\n 12.Arena, F., et al., Droplets generated from toilets during urination as a possible vehicle of carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae. Antimicrob Resist Infect Control, 2021. 10(1): p. 149.13.Neidhofer, C., et al., Hospital sanitary facilities on wards with high antibiotic exposure play an important role in maintaining a reservoir of resistant pathogens, even over many years. Antimicrob Resist Infect Control, 2023. 12(1): p. 33.<\/p>\n 14.Kotay, S., et al., Spread from the Sink to the Patient: In Situ Study Using Green Fluorescent Protein (GFP)-Expressing Escherichia coli To Model Bacterial Dispersion from Hand-Washing Sink-Trap Reservoirs. Appl Environ Microbiol, 2017. 83 (8).<\/p>\n 15.Shaw, E., et al., Control of endemic multidrug-resistant Gram-negative bacteria after removal of sinks and implementing a new water-safe policy in an intensive care unit. J Hosp Infect, 2018. 98(3): p. 275-281.<\/p>\n 16. Jamal, A.J., et al., Standard versus combined chemical, mechanical, and heat decontamination of hospital drains harboring carbapenemase-producing organisms (CPOs): A randomized controlled trial. Infect Control Hosp Epidemiol, 2021. 42(10): p. 1275-1278.<\/p>\n 9.sciensano.be [Internet]. [cited 2023 Dec 11]. Surveillance-sentinelle des syndromes grippaux (y compris COVID-19) dans les maisons de repos (et de soins) belges. Available from: https:\/\/www.sciensano.be\/fr\/projets\/surveillance-sentinelle-des-syndromes-grippaux-y-compris-covid-19-dans-les-maisons-de-repos-et-de<\/p>\n 10. Janssens R, Hanoteaux S, Maloux H, Klamer S, Laisnez V, Verhaegen B, et al. SARS-CoV-2 Surveillance in Belgian Wastewaters. Viruses. 2022 Sep 2;14(9):1950.\u00a0<\/span><\/p>\nM\u00e9thode<\/b><\/h2>\n
R\u00e9sultats<\/b><\/h2>\n
Discussion\u00a0<\/span><\/b><\/h2>\n
Conclusion<\/b><\/h2>\n
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<\/p>\nR\u00e9f\u00e9rences :<\/b><\/h2>\n
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